Rapid Detection Assays for Food and Water.
Language: English
Published by The Royal Society of Chemistry, Cambridge, 2001
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- Used

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- Title
- Rapid Detection Assays for Food and Water.
- Author
- Clark, Stuart A., K. Clive Thompson C. William Keevil a. o.:
- Publisher
- The Royal Society of Chemistry, Cambridge
- Publication year
- 2001
- Binding
- Hardcover
- Language
- English
- ISBN 10
- 0854047794
- ISBN 13
- 9780854047796
- Item weight
- 510 grams
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- Chemie der Lebensmittel
Bringing together international experts in the field, this book presents original, state-of-the-art research and a review of the established methods in this key subject area.
"Synopsis" may belong to another edition of this title.
Excerpt. © Reprinted by permission. All rights reserved.
Rapid Detection Assays for Food and Water
By S. Clark, K.C. Thompson, C.W. Keevil, M. SmithThe Royal Society of Chemistry
All rights reserved.
Contents
Rapid Methods in Water Microbiology,
Suitability of Microbial Assays for Potable Water and Wastewater Applied to Land C.W. Keevil, 3,
Solid Phase Cytometry for Rapid Detection of Total Coliform and E. coli, Including O157:H7, in Water and Food B.H. Pyle, G.A. McFeters, S.O. Van Poucke and H.J. Nelis, 27,
Rapid Same-Day Microcolony Enumeration Technique for E. coli in Drinking Water D.P. Sartory, A. Parton and C. Rackstraw, 31,
Immunomagnetisable Separation for the Recovery of Cryptosporidium sp. Oocysts C.A. Paton, D.E. Kelsey, E.A. Reeve, K. Punter, J.H. Crabb and H. V. Smith, 38,
Use of a Combined IMS/Laser Scanning Procedure for the Separation and Subsequent Detection of Cryptosporidium Oocysts from Water Concentrates D. T. Reynolds, R.B. Slade and C.R. Fricker, 44,
Polymerase Chain Reaction for the Detection of Parasites and Viruses C.P. Gerba, K.A. Reynolds, S.E. Dowd and I.L. Pepper, 49,
A Rapid Detection Method and Infectivity Assay for Water-borne Cryptosporidium Using PCR and In vitro Cell Culture R. De Leon, P.A. Rochelle, H. Baribeau, M.H. Stewart and R.L. Wolfe, 55,
Molecular Techniques for the Detection of Bacterial Pathogens in Drinking Water N. Lightfoot, M. Pearce, B. Place, and C. Salgado, 59,
Application of PCR for the Detection of Viable Pathogenic Bacteria from Water Samples K. Delabre, M.-R. de Roubin, V. Lahoussine, P. Cervantes and J.-C. Joret, 66,
Rapid Methods in Water Chemistry,
Rapid Chemical Assays Based on Test Kits M.D. Buck, 73,
A Contribution to Convenience for Enzyme-based Assays of Pesticides in Water A.L. Hart and W.A. Collier, 80,
Water Quality Control in the Netherlands: Selection and Evaluation of Indicative Methods E.P. Meulenberg, 84,
Analytical Microsystems – An Overview D.H. Craston and S. Cowen, 93,
Rapid Detection of Changes in Fluid Composition Using On-line Impedance Spectroscopy M.E.H. Amrani, R.M. Dowdeswell and P.A. Payne, 10,
The Electrochemical Detection of Pentachlorophenol (PCP) Using the Inhibition of Lactate Dehydrogenase (LDH) as a Model System S.J.Young, A.A. Dowman, J. Hart and D.C. Cowell, 105,
Microbiotests for Rapid and Cost-effective Hazard Assessment of Industrial Products, Effluents, Wastes, Waste Leachates and Groundwaters G. Persoone, 109,
Use of Lux Bacterial Biosensors for Rapid Toxicity Detection and Protection of Sewage Treatment Processes K. Killham, A.M. Horsburgh, D.P. Mardlin, I. Caffoor, L.A. Glover and M.S. Cresser 116,
Rapid Detection of Residual Cleaning Agents and Disinfectants in Food Factories J. Lappalainen, S. Loikkanen, M. Havana, M. Karp, A.-M. Sjöberg and G. Wirtanen, 121,
Rapid Methods in Food Microbiology,
Food Sample Preparation and Enrichment for Rapid Detection A.N. Sharpe, 129,
The Separation of Food Pathogens Using Chromatographic Techniques T.N. Whitmore and P.D. Gray, 138,
The Accreditation of Microbiological Test Methods R. Betts, 142,
The Use of a Minimal Number of Vapour Sensors for the Assessment of Food Quality B.P.J. de Lacy Costello, R.J. Ewen, H.E. Gunson, N.M. Ratcliffe and P.T.N. Spencer-Phillips, 148,
Rapid Detection of Enterobacteriaceae in Dehydrated Foods Using Impedance Microbiology: Critical Role of the Pre-enrichment Phase A. Pridmore and P. Silley, 152,
Immunoassays for Rapid Detection of Foodborne Pathogens and Toxins: A Review P. C. Vasavada, 157,
Use of Bacteriophage for Rapid Detection of Microorganisms R.J. Mole, 166,
Rapid Methods for Enumerating the Heterotrophic Bacteria in Bottled Natural Mineral Water M. Fitzgerald, M. Kerr and J.J. Sheridan, 170,
Development of Methods to Detect Foodborne Viruses A.S. Kurdziel, N. Wilkinson, S.H. Gordon and N. Cook, 175,
CEN Validation of Rapid Alternative Microbiological Methods (MICROVAL) R. Holbrook, 178,
Rapid Methods in Food Chemistry,
Biosensors for Pesticide Residues in the Environment and in Food P.M. Krämer, 183,
Development of Disposable Immunosensors for the Rapid Assay of Seafood Toxins L. Micheli, D. Moscone, S. Marini, S. Di Stefano and G. Palleschi, 190,
Selective Electrochemical Biosensors for Application in Food Quality Control G. Palleschi, D. Compagnone and D. Moscone, 194,
Flow-through Enzyme Immunoassay Kits for the Rapid Detection of the Mycotoxins Ochratoxin A, T-2 Toxin and Aftatoxin M1 in Food and Feed S. De Saeger, L. Sibanda and C. Van Peteghem, 202,
Evaluation of Novel In vitro Assays for the Detection of Botulinum Toxins in Foods M. Wictome, K. Newton, K. Jameson, P. Dunnigan, S. Clarke, S. Wright, J. Gaze, A. Tauk, K.A. Foster and C.C. Shone, 206,
DNA Based Methods for Meat Authentication R.G. Bardsley and A.K. Lockley, 210,
The Application of DNA Based Techniques for the Determination of Food Authenticity J. Sawyer, D. Hunt, N. Harris, S. Gout, C. Wood, H. Gregory, D. McDowell, R. Barallon and H. Parkes, 220,
Testing for Genetically Modified Components in Foods – Present and Future Challenges A.B. Hanley, H. Hird and M.L. Johnson, 225,
Toxicological End-points – The Zero Rabbit Option E.J. Hughson, S.L. Oehlschlager and A.B. Hanley, 230,
FAPAS: An Independent Assessment of Laboratory Proficiency A.L. Patey, 234,
Subject Index, 239,
CHAPTER 1
SUITABILITY OF MICROBIAL ASSAYS FOR POTABLE WATER AND WASTEWATER APPLIED TO LAND
C. W. Keevil
School of Biological Sciences, University of Southampton, Bassett Crescent East, Southampton SO16 7PX, UK
1 INTRODUCTION
Emerging methods of sample preparation and pathogen detection have been developed in the food, clinical and veterinary industries, involving direct specific detection or post-enrichment culture screening with molecular, immunological and enzyme assay technologies. Some of these have also been used, with some success, by water companies involved in the supply of potable water and have been validated as ISO and CEN standards. Specific immunomagnetic separation technologies, avoiding selective enrichment, appear particularly promising and are already incorporated into several national standards for Cryptosporidium and Giardia detection in raw and treated waters. The human population continues to expand at an ever increasing rate, requiring greater intensification of animal rearing for food production, and there are inevitably greater demands on the environment to deal with the human and animal faecal wastes which are generated. Many instances of foodborne and waterborne disease outbreaks point to the transmission of new and reemerging pathogens in faecal wastes which are recycled to land for economic and environmental reasons. The challenge for analysts, therefore, is to adapt some of the methods described above, or develop new methods, to provide an evaluation of safe storage and treatment practices for pathogen removal before the wastes can be safely recycled to land. This problem has been exacerbated by the realisation that some pathogens may be sub-lethally damaged, but possibly still capable of causing disease, due to the storage and treatment processes and might be missed using conventional culture recovery techniques. The molecular techniques are presently more suited to pathogen detection, not viability, and research is now focusing on appropriate resuscitation techniques involving either presence/absence or the newer quantitative methodologies.
This paper will address some of the current legislation to ensure safe pathogen limits in wastes and the practicality of available or prototype methods for their detection in complex faecal matrices.
2 MICROBIAL ASSAYS FOR POTABLE WATER
The water industry has relied for many years on surrogate general indicators of faecal pollution to maintain a wholesome supply of potable water. Bile salt-tolerant, facultatively anaerobic bacteria isolated on MacConkey agar at 37°C, and capable of producing acid and gas from lactose at this temperature, were described as "coliform organisms". Semi-selective MacConkey medium (supplied commercially by Oxoid, Difco et al.) was devised to reduce the overgrowth when isolating faecal lactose-fermenting microorganisms; the medium incorporates sodium taurocholate (bile salts), to inhibit common environmental contaminants, and lactose is fermented to produce the neutral red coloration. Pale colonies of Salmonella or Shigella spp. are usually seen among red colonies of E. coli. Because coliform organisms can be of non-faecal origin, presumptive faecal coliforms were described as those capable of producing acid at 44°C, the majority subsequently being identified as Escherichia coli. Total coliform detection came to be relied upon because of the relative ease, speed and low cost of detection.
Alternative media include membrane lauryl sulphate broth and agar (MLSB; MLSA), violet red bile agar (VRBA), lauryl tryptose lactose agar (LTLA), desoxycholate agar and CLED agar. MLSA and desoxycholate agar (DCA) are able to differentiate E. coli from Klebsiella oxytoca in environmental water samples by virtue of E. coli' s ability to grow at 44°C as well as 37°C. MLSB is recommended by the PHLS/SCA for the isolation and enumeration of total coliforms and E. coli by membrane filtration. The recommended method for membrane filtration involves incubation of duplicate membranes on MLSB- soaked pads at 30°C for 4 h, followed by incubation of one at 37°C for 14 h (for presumptive coliforms) and the other at 44°C for 14 h (for presumptive E. coli). Minerals Modified Glutamate Medium (MMGM) is recommended for the isolation of coliforms from waters by multiple tube and is slightly superior to LTLA.4 MT7 agar (Difeo) was developed to isolate injured coliforms and is particularly suited to the recovery of chlorine treated samples.
Latterly, enzyme detection methods have been developed, based on the hydrolysis by β-galactosidase of chromogenic and fluorogenic substrates, such as 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside (X-gal) and β-methylumbelliferyl-β-D-galactopyranoside, respectively. These methods offer a much quicker indication of the presence of "biologically active" coliforms. Furthermore, specificity to detect E. coli has been introduced by incorporation in various media of chromogenic and fluorogenic substrates of β-glucuronidase. These assays can be performed in liquid culture or aid in the differentiation and identification of bacterial colonies recovered on agar media. Incorporation of 4-methylumbelliferyl-β-D-glucuronide (MUG) into any of these media may give some indication of the presence of E. coli due to β-glucuronidase activity producing blue-white fluorescent colonies when viewed under ultraviolet light at 366 nm. Incorporation of MUG at 50 or 100 mg l-1 for liquid or agar media, respectively, can be used to provide presumptive evidence for the presence of E. coli which should be confirmed by further biochemical or immunological tests. Sartory and Howard described an agar medium, membrane lactose glucuronide agar (mLGA), for the simultaneous detection of E. coli and coliforms by membrane filtration without the need for UV light observation. The 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-glucuronide chromophore in mLGA turned β-glucuronidase-producing colonies green (lac+ glue- colonies are yellow) and gave similar E. coli confirmation rates (92%) as isolation on MLSA. Pyruvate was also added to mLGA to substantially improve recovery of chlorine stressed coliforms. This method has now been successfully adapted to quantify the numbers of E. coli surviving in raw and treated sewage sludge 9; agar plates are incubated at 30°C for 4 [+ or -] 0.5 hours, followed by 44.0°C for 14 hours.
The use of bacterial indicators has demonstrated the effectiveness of physical and chemical treatment barriers at treatment works and in supply to prevent distribution of viable pathogens. There are several caveats, however. Are some chlorine-treated coliforms only sub-lethally damaged and, although viable, incapable of growth in the normal isolation media? As discussed, several chlorine-stress recovery agar media have been developed to help overcome this problem. Are there pathogens more tolerant of chlorine than the coliforms? Occasional waterborne outbreaks of infection caused by pathogens resistant to chlorine disinfectants, particularly Cryptosporidium parvum, have highlighted the need for more specific tests of pathogens in treated water. Because of the potentially low infectious dose of some of these emergent pathogens, the assay methods require a high precision to provide the confidence of being able to detect very low numbers in large volumes of treated water. This volume provides several important examples of the progress made in this area.
3 RECYCLING OF WASTES TO LAND
In 1992 approximately 470,000 dry tonnes of sewage sludge or biosolids were disposed of to soil in the UK. This amount has now doubled, due mainly to the ban on sea dumping of sewage which came into force in 1998 as a result of the EC Urban Waste Water Treatment Directive (1991; incorporated into UK law 1994). Land application is recognised as the Best Practicable Environmental Option for using sewage sludge. Sewage sludge and agricultural wastes are recycled to soil with the aim of improving soil condition and fertility. However, sewage sludge may contain a range of microorganisms pathogenic to man, including bacteria (e.g. Salmonella, Campylobacter, Listeria and various strains of E. coli), virus particles (e.g. Polio and Hepatitis), protozoa (e.g. Cryptosporidium) and other intestinal parasites (e.g. Helminths) (Table 1).
Without suitable treatment, there is potential for pathogens present to wash into adjacent surface waters, contaminate crops (fresh produce is of particular concern), or spread directly to man or farm and domestic animals using the land. Application of human sewage sludge currently represents a small proportion of waste applied to agricultural land; by far the greatest amounts are contributed by a variety of animal wastes including compost, faecal slurries, poultry litter, etc. (Table 2). The availability of suitable detection methods to facilitate the understanding the survival of potential human and animal pathogens in these wastes, before and after application to land, is critical to delivering safe agricultural products to the market place.
EU Council Directive 86/278/EEC regulates sewage sludge applications to agricultural land throughout the EU. The Directive is implemented in the UK by statutory instrument The Sludge (Use in Agriculture) Regulations 1989 (SI 1989, No 1263, as amended SI 880 1990; HMSO), regarding the application of raw and treated sewage sludge to agricultural land. The regulations are supported by the DOE Code of Practice for Agricultural Use of Sewage Sludge 1989 (revised 1996; DOE). These strictly limit how the sewage sludge is to be applied, under what conditions and to which crops, reducing as far as possible occasional contact with animals and man. The Code of Practice was developed in the 1970s from the data available at the time, and before the emergence of highly infectious pathogens such as E. coli 0157.
However, recent articles in the press have indicated the increasing public concern about the dangers associated with the routine dumping of blood, offal and raw sewage onto British farmland (see, for example, the "Fields of filth" article by Day). These articles paint an alarming picture of the perceived risks, largely because of concerns over newly emergent foodborne diseases believed to be caused by variant prion proteins, bacteria such as verocytotoxic E. coli, S. enteritidis and antibiotic-resistant S. typhimurium DT 104, and parasitic protozoa such as C. parvum. The problems these now cause have exacerbated the recurring problems of foodborne Campylobacter, Salmonella and Shigella spp. There are over 100,000 cases of gastro-enteritis reported in the UK each year, with some believing that the actual number infected is close to 1 million.
Pathogens such as toxin-producing Escherichia coli 0157 may indeed be occasionally present in sewage and this strain's very low infectious dose (possibly <10 cells) has heightened public health concern over its transmission and persistence in the environment. Work in strictly controlled laboratory conditions has shown that this pathogen is physiologically versatile (James and Keevil, 1999) and may survive for months in cattle faeces, manure, model soil systems (Figure 1) and river water, highlighting the potential to contaminate growing crops. Nevertheless, caution must be urged in interpretation of the data at this time as there has yet to be an investigation under field conditions of pathogen survival in a representative range of the different untreated and treated sewage or abattoir waste which may be applied to land. Preliminary work in the laboratory indicates that E. coli 0157 may be killed in sewage sludge during lime stabilisation (Maule and Keevil, unpublished data).
Similarly, C. parvum oocysts and C. jejuni may persist in aquatic environments for several months, attached to surfaces, and have been associated with foodborne outbreaks. Salmonellae cause a significant number of foodborne infections associated with fresh produce, including S. enteritidis PT4, and there is concern over the increasing disease incidence of the multiple drug resistant S. typhimurium DT104 which is found in cattle and poultry waste. L. monocytogenes is widely distributed in nature and work has shown it to be a versatile, robust pathogen capable of survival and growth at low temperatures whilst maintaining a virulent phenotype. It is undoubtedly food borne, however it cannot be truly described as a food poisoning organism since its symptoms are rarely associated with the gastrointestinal tract. Infection ranges from symptomless carriage to fatal septicaemia, meningitis or neonatal abortion. In addition to consumption of dairy products, other implicated foods include meat pates, coleslaw, poultry, fin fish and shellfish. Several large foodborne outbreaks occurred in North America in the 1980s which were notable for a case fatality rate of 30%.
In addition to domestic sources, effluents from agricultural and commercial enterprises (i.e. cattle markets, abattoirs etc.) can be responsible for releasing large numbers of Cryptosporidium sp. oocysts into sewage. The first recorded outbreak of waterborne Cryptosporidiosis was associated with contamination of a well water supply with oocysts derived from sewage. Examination of stool specimens from 79 residents who consumed water from the well source indicated that gastrointestinal illness was 12 times greater than in the surrounding communities which consumed water from a different water source. Since then, numerous waterborne outbreaks of human Cryptosporidiosis have been reported. The potential for causing disease in large numbers of individuals was demonstrated in the Milwaukee outbreak which affected an estimated 403,000 individuals. Through the use of molecular techniques, four isolates from this outbreak have been found to infect only humans, indicating that human sewage might have been the source.
Approximately 6000 cases of Cryptosporidiosis in England and Wales are reported to the PHLS each year, and this is believed to be gross underestimate of actual cases. There are more cases of Giardiasis reported, but these are mainly sporadic and the source of infection untraceable. The environmental reservoir for the aetiological agent, Giardia intestinalis (lamblia), is unclear but it has been reported to be present in beavers (hence the name "Beaver fever") and farm animals, and spread in water. Although Giardia cysts are considered less robust than Cryptosporidium oocysts, one report has suggested that 10% of infective cysts can survive several weeks of incubation in swine manure slurry.25 This reinforces the need for proper treatment of organic wastes before disposable to agricultural land.
The term enteroviruses is a general description for viruses that infect and replicate in cells of the gastrointestinal tract. A prominent family of viruses within the large group of viruses that are found in the intestinal tract are the Picornaviridae. Within this family are several genera including polioviruses, coxsackieviruses (two groups, A and B), echoviruses and enteroviruses (a specific name and as opposed to the general description above). Enteroviruses infecting humans are found world-wide and humans are the only known natural hosts. Young children are the most susceptible to infection. Transmission is usually by the faeco-oral or by the respiratory route where there is an associated respiratory illness. The viruses may be excreted in the stool for many weeks. Poliovirus in sewage is decreasing due to vaccination and the increased use of disposable nappies diverting contaminated faeces to solid waste. Enteroviruses have been detected in water, soil, vegetables and shellfish and may possibly be transmitted in the community by contact with contaminated food or water. In practice, nearly all foodborne viral illness is either hepatitis A or viral gastro-enteritis due frequently to small round structured viruses (SRSV). Food borne transmission of other viruses causing gastro-enteritis, such as rotavirus, appears rare. Current detection methods still rely on the "gold standard" of electron microscopy, but newer methods involving cell culture (although this is not possible yet with SRSV) and/or PCR, RT-PCR and antibodies are being developed. Cell culture at least allows the detection and possible quantification of viable organisms.
(Continues...)
Excerpted from Rapid Detection Assays for Food and Water by S. Clark, K.C. Thompson, C.W. Keevil, M. Smith. Copyright © 2001 The Royal Society of Chemistry. Excerpted by permission of The Royal Society of Chemistry.
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Wir erheben personenbezogene Daten, wenn Sie uns diese im Rahmen Ihrer Bestellung oder bei einer Kontaktaufnahme mit uns (z.B. per Kontaktformular oder E-Mail) freiwillig mitteilen. Welche Daten erhoben werden, ist aus den jeweiligen Eingabeformularen ersichtlich. Wir verwenden die von Ihnen mitgeteilten Daten zur Vertragsabwicklung und Bearbeitung Ihrer Anfragen. Nach vollständiger Abwicklung des Vertrages werden Ihre Daten für die weitere Verwendung gesperrt und nach Ablauf der steuer- und handelsrechtlichen Aufbewahrungsfristen gelöscht, sofern Sie nicht ausdrücklich in eine weitere Nutzung Ihrer Daten eingewilligt haben oder wir uns eine darüber hinausgehende Datenverwendung vorbehalten, die gesetzlich erlaubt ist und über die wir Sie nachstehend informieren.
Datenweitergabe zur Vertragserfüllung
Zur Vertragserfüllung geben wir Ihre Daten an das mit der Lieferung beauftragte Versandunternehmen weiter, soweit dies zur Lieferung bestellter Waren erforderlich ist. Je nach dem, welchen Zahlungsdienstleister Sie im Bestellprozess auswählen, geben wir zur Abwicklung von Zahlungen die hierfür erhobenen Zahlungsdaten an das mit der Zahlung beauftragte Kreditinstitut und ggf. von uns beauftragte Zahlungsdienstleister weiter bzw. an den ausgewählten Zahlungsdienst. Zum Teil erheben die ausgewählten Zahlungsdienstleister diese Daten auch selbst, soweit Sie dort ein Konto anlegen. In diesem Fall müssen Sie sich im Bestellprozess mit Ihren Zugangsdaten bei dem Zahlungsdienstleister anmelden. Es gilt insoweit die Datenschutzerklärung des jeweiligen Zahlungsdienstleisters.
Zahlungsart: Datenschutzbestimmungen zu PayPal als Zahlungsart
PayPal ist ein Online-Zahlungsdienstleister. Zahlungen werden über sogenannte PayPal-Konten abgewickelt, die virtuelle Privat- oder Geschäftskonten darstellen. Zudem besteht bei PayPal die Möglichkeit, virtuelle Zahlungen über Kreditkarten abzuwickeln, wenn ein Nutzer kein PayPal-Konto unterhält. Ein PayPal-Konto wird über eine E-Mail-Adresse geführt, weshalb es keine klassische Kontonummer gibt. PayPal ermöglicht es, Online-Zahlungen an Dritte auszulösen oder auch Zahlungen zu empfangen. PayPal übernimmt ferner Treuhänderfunktionen und bietet Käuferschutzdienste an.
Die Europäische Betreibergesellschaft von PayPal ist die PayPal (Europe) S.à.r.l. & Cie. S.C.A., 22-24 Boulevard Royal, 2449 Luxembourg, Luxemburg.
Wählt die betroffene Person während des Bestellvorgangs als Zahlungsmöglichkeit „PayPal“ aus, werden Daten der betroffenen Person an PayPal übermittelt. Mit der Auswahl dieser Zahlungsoption willigt die betroffene Person in die zur Zahlungsabwicklung erforderliche Übermittlung personenbezogener Daten ein.
Bei den an PayPal übermittelten personenbezogenen Daten handelt es sich in der Regel um Vorname, Nachname, Adresse, Email-Adresse oder andere Daten, die zur Zahlungsabwicklung notwendig sind. Zur Abwicklung des Kaufvertrages notwendig sind auch solche personenbezogenen Daten, die im Zusammenhang mit der jeweiligen Bestellung stehen.
Die Übermittlung der Daten bezweckt die Zahlungsabwicklung und die Betrugsprävention. Der für die Verarbeitung Verantwortliche wird PayPal personenbezogene Daten insbesondere dann übermitteln, wenn ein berechtigtes Interesse für die Übermittlung gegeben ist. Die zwischen PayPal und dem für die Verarbeitung Verantwortlichen ausgetauschten personenbezogenen Daten werden von PayPal unter Umständen an Wirtschaftsauskunfteien übermittelt. Diese Übermittlung bezweckt die Identitäts- und Bonitätsprüfung.
PayPal gibt die personenbezogenen Daten gegebenenfalls an verbundene Unternehmen und Leistungserbringer oder Subunternehmer weiter, soweit dies zur Erfüllung der vertraglichen Verpflichtungen erforderlich ist oder die Daten im Auftrag verarbeitet werden sollen.
Die betroffene Person hat die Möglichkeit, die Einwilligung zum Umgang mit personenbezogenen Daten jederzeit gegenüber PayPal zu widerrufen. Ein Widerruf wirkt sich nicht auf personenbezogene Daten aus, die zwingend zur (vertragsgemäßen) Zahlungsabwicklung verarbeitet, genutzt oder übermittelt werden müssen.
Die geltenden Datenschutzbestimmungen von PayPal können unter https://www.paypal.com/de/webapps/mpp/ua/privacy-full abgerufen werden.
Auskunftsrecht und Kontaktmöglichkeit
Sie haben ein Recht auf unentgeltliche Auskunft über die bei uns zu Ihrer Person gespeicherten Daten sowie ggf. ein Recht auf Berichtigung, Sperrung oder Löschung dieser Daten. Bei Fragen zur Erhebung, Verarbeitung oder Nutzung Ihrer personenbezogenen Daten, bei Auskünften, Berichtigung, Sperrung oder Löschung von Daten sowie Widerruf erteilter Einwilligungen oder Widerspruch gegen eine bestimmte Datenverwendung wenden Sie sich bitte direkt an uns über die Kontaktdaten: Antiquariat Silvanus, Inh. Johannes Schaefer, Kesselinger Strasse 41-45, Telefon: 02643-90 33 89, Fax: 02643-90 33 92, E-Mail: info@buecher-silvanus.de.
§ 10 Schlussbestimmungen
-
Es gilt das Recht der Bundesrepublik Deutschland. Die Bestimmungen des UN-Kaufrechts finden keine Anwendung. Maßgebliche Sprache für den Vertragsschluss sowie das gesamte
Vertragsverhältnis ist Deutsch. -
Ist der Kunde Kaufmann oder juristische Person öffentlichen Rechts, ist ausschließlicher
Gerichtsstand für alle Streitigkeiten aus diesem Vertrag unser Geschäftssitz (Bad Neuenahr-Ahrweiler). Dasselbe gilt, wenn der Kunde keinen allgemeinen Gerichtsstand in Deutschland hat oder Wohnsitz oder gewöhnlicher Aufenthalt im Zeitpunkt der Klageerhebung nicht bekannt sind. -
Sollten einzelne Bestimmungen des Vertrages mit dem Kunden einschließlich dieser Allgemeinen Geschäftsbedingungen ganz oder teilweise unwirksam sein oder werden, so
wird hierdurch die Gültigkeit der übrigen Bestimmungen nicht berührt.
Bankverbindung: Konto 24 000 143 bei der Sparkasse KölnBonn (BLZ 370 501 98) IBAN: DE33 3705 0198 0024 0001 43; Swift-BIC: COLSDE33;
Right of withdrawal
If you are a consumer you can withdraw from the contract in accordance with the following. Consumer means any natural person who is acting for purposes which are outside his trade, business, craft or profession.
Information regarding the right of withdrawal
Statutory right to withdraw
You have the right to withdraw from this contract within 14 days without giving any reason.
The withdrawal period will expire after 14 days from the day on which you acquire, or a third party other than the carrier and indicated by you acquires, physical possession of the last good or the last lot or piece.
To exercise the right of withdrawal, electronically fill in and submit a clear statement on our website, under "My Purchases" in "My Account". We will communicate to you an acknowledgement of receipt of such a withdrawal on a durable medium (e.g. by e-mail) without delay.
To meet the withdrawal deadline, it is sufficient for you to send your communication concerning your exercise of the right of withdrawal before the withdrawal period has expired.
Effects of withdrawal
If you withdraw from this contract, we will reimburse to you all payments received from you, including the costs of delivery (except for the supplementary costs arising if you chose a type of delivery other than the least expensive type of standard delivery offered by us).
We may make a deduction from the reimbursement for loss in value of any goods supplied, if the loss is the result of unnecessary handling by you.
We will make the reimbursement without undue delay, and not later than 14 days after the day on which we are informed about your decision to withdraw from this contract.
We will make the reimbursement using the same means of payment as you used for the initial transaction, unless you have expressly agreed otherwise; in any event, you will not incur any fees as a result of such reimbursement.
We may withhold reimbursement until we have received the goods back, or you have supplied evidence of having sent back the goods, whichever is the earliest.
You shall send back the goods or hand them over to Antiquariat Silvanus - Inhaber Johannes Schaefer, Ahrbrück, Germany, +49 02643-903389, without undue delay and in any event not later than 14 days from the day on which you communicate your withdrawal from this contract to us. The deadline is met if you send back the goods before the period of 14 days has expired. You will have to bear the direct cost of returning the goods. You are only liable for any diminished value of the goods resulting from the handling other than what is necessary to establish the nature, characteristics and functioning of the goods.
Exceptions to the right of withdrawal
The right of withdrawal does not apply to:
- The delivery of newspapers, journals or magazines with the exception of subscription contracts; and
- The supply of digital content which is not supplied on a tangible medium (e.g. on a CD or DVD) if you accepted when you placed your order that we could start to deliver it, and that you could not withdraw once delivery had started.
Shipping terms
Die Versandkostenpauschalen basieren auf Sendungen mit einem durchschnittlichen Gewicht. Falls das von Ihnen bestellte Buch besonders schwer oder sperrig sein sollte, werden wir Sie informieren, falls zusätzliche Versandkosten anfallen. Widerrufsbelehrung Widerrufsrecht Sie haben das Recht, binnen vierzehn Tagen ohne Angabe von Gründen diesen Vertrag zu widerrufen. Die Widerrufsfrist beträgt vierzehn Tage ab dem Tag, an dem Sie oder ein von Ihnen benannter Dritter, der nicht der Beförderer ist, die letzte Ware in Besitz genommen haben bzw. hat. Um Ihr Widerrufsrecht auszuüben, müssen Sie uns, Antiquariat Silvanus, Inh. Johannes Schaefer, Kesselinger Strasse 41-45, Telefon: 02643-90 33 89, Fax: 02643-90 33 92, E-Mail: info@buecher-silvanus.de, mittels einer eindeutigen Erklärung (z. B. ein mit der Post versandter Brief, Telefax oder E-Mail) über Ihren Entschluss, diesen Vertrag zu widerrufen, informieren. Sie können dafür das beigefügte Muster- Widerrufsformular verwenden, das jedoch nicht vorgeschrieben ist. Zur Wahrung der Widerrufsfrist reicht es aus, dass Sie die Mitteilung über die Ausübung des Widerrufsrechts vor Ablauf der Widerrufsfrist absenden. Folgen des Widerrufs Wenn Sie diesen Vertrag widerrufen, haben wir Ihnen alle Zahlungen, die wir von Ihnen erhalten haben, einschließlich der Lieferkosten (mit Ausnahme der zusätzlichen Kosten, die sich daraus ergeben, dass Sie eine andere Art der Lieferung als die von uns angebotene, günstigste Standardlieferung gewählt haben), unverzüglich und spätestens binnen vierzehn Tagen ab dem Tag zurückzuzahlen, an dem die Mitteilung über Ihren Widerruf dieses Vertrags bei uns eingegangen ist. Für diese Rückzahlung verwenden wir dasselbe Zahlungsmittel, das Sie bei der ursprünglichen Transaktion eingesetzt haben, es sei denn, mit Ihnen wurde ausdrücklich etwas anderes vereinbart; in keinem Fall werden Ihnen wegen dieser Rückzahlung Entgelte berechnet. Wir können die Rückzahlung verweigern, bis wir die Waren wieder zurückerhalten haben oder bis Sie den Nachweis erbracht haben, dass Sie die Waren zurückgesandt haben, je nachdem, welches der frühere Zeitpunkt ist. Sie haben die Waren unverzüglich und in jedem Fall spätestens binnen vierzehn Tagen ab dem Tag, an dem Sie uns über den Widerruf dieses Vertrags unterrichten, an uns zurückzusenden oder zu übergeben. Die Frist ist gewahrt, wenn Sie die Waren vor Ablauf der Frist von vierzehn Tagen absenden. Sie tragen die unmittelbaren Kosten der Rücksendung der Waren. Sie müssen für einen etwaigen Wertverlust der Waren nur aufkommen, wenn dieser Wertverlust auf einen zur Prüfung der Beschaffenheit, Eigenschaften und Funktionsweise der Waren nicht notwendigen Umgang mit ihnen zurückzuführen ist. Ende der Widerrufsbelehrung
Muster- Widerrufsformular
Wenn Sie den Vertrag widerrufen wollen, dann füllen Sie bitte dieses Formular aus und
senden Sie es zurück.
An [Herr Johannes Schaefer, handelnd unter Antiquariat Silvanus, Kesselinger Straße 41-45, 53506 Ahrbrück; Telefon: 02643-90 33 89; Fax: 02643-9033 92; E-Mail: info@buecher-silvanus.de]:
Hiermit widerrufe(n) ich/wir () den von mir/uns () abgeschlossenen Vertrag über den Kauf
der folgenden Waren ()/ die Erbringung der folgenden Dienstleistung ()
- Bestellt am ()/erhalten am ()
- Name des/der Verbraucher(s)
- Anschrift des/der Verbraucher(s)
- Unterschrift des/der Verbraucher(s) (nur bei Mitteilung auf Papier)
- Datum
(*) Unzutreffendes streichen.